| 英汉缩略语名词对照 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-12页 |
| 英文摘要 | 第12-19页 |
| 前言 | 第19-29页 |
| 第一部分 人牙周膜细胞hPDLCs的分离、培养和鉴定 | 第29-40页 |
| 1 材料与方法 | 第29-35页 |
| 1.1 细胞培养实验材料及耗材 | 第29-30页 |
| 1.2 体外分子实验材料及耗材 | 第30-31页 |
| 1.3 体外分离培养hPDLCs | 第31页 |
| 1.4 hPDLCs细胞培养,传代及冻存 | 第31-32页 |
| 1.5 hPDLCs细胞鉴定 | 第32-35页 |
| 2 实验结果 | 第35-37页 |
| 2.1 hPDLC细胞形态学特征 | 第35页 |
| 2.2 hPDLC细胞生长曲线 | 第35-36页 |
| 2.3 hPDLC细胞角蛋白和波形蛋白表达及分布 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-40页 |
| 第二部分 低氧微环境下hPDLCs的生物学行为变化 | 第40-47页 |
| 1 材料和方法 | 第40-43页 |
| 1.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 1.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 2 实验结果 | 第43-46页 |
| 2.1 缺氧对人牙周膜细胞增殖的影响 | 第43-44页 |
| 2.2 缺氧对人牙周膜细胞形态的影响 | 第44-45页 |
| 2.3 缺氧对人牙周膜细胞迁移的影响 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 第三部分 低氧微环境下hPDLCs细胞中HIF1α和炎症相关信号通路的表达变化 | 第47-64页 |
| 1 材料与方法 | 第47-55页 |
| 1.1 免疫印迹实验相关材料及耗材 | 第47-49页 |
| 1.2 定量PCR及免疫荧光相关试剂及耗材 | 第49页 |
| 1.3 免疫印迹法检测缺氧对hPDLC细胞中HIF-1α和IGF1 表达的影响 | 第49-52页 |
| 1.4 免疫荧光法检测低氧处理后HIF1α的细胞定位变化 | 第52-53页 |
| 1.5 定量PCR方法检测低氧条件下hPDLC细胞中成骨分化以及Wnt/β-catenin信号通路基因表达变化 | 第53-55页 |
| 2 实验结果 | 第55-61页 |
| 2.1 hPDLC细胞成骨分化相关基因以及Wnt/β-catenin信号通路基因的上下游引物 | 第55-56页 |
| 2.2 低氧诱导hPDLC细胞后成骨相关基因表达变化 | 第56-57页 |
| 2.3 低氧诱导hPDLC细胞后Wnt/catenin信号通路相关基因表达变化 | 第57-58页 |
| 2.4 缺氧对人牙周膜细胞HIF1α、IGF1 表达的影响 | 第58-61页 |
| 3 讨论 | 第61-64页 |
| 第四部分 牙周炎患者LncRNAs的差异表达谱 | 第64-73页 |
| 1 材料与方法 | 第65-66页 |
| 2 实验结果 | 第66-71页 |
| 2.1 40例牙周炎患者的临床信息 | 第67页 |
| 2.2 差异表达LncRNAs的生物信息学分析 | 第67-69页 |
| 2.3 芯片结果的验证 | 第69-71页 |
| 3 讨论 | 第71-73页 |
| 全文总结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 文献综述 | 第82-90页 |
| 参考文献 | 第86-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第91页 |
广告服务 
