摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
第一章 绪论 | 第12-20页 |
1.1 研究背景 | 第12页 |
1.2 糖蜜酒精废水的色素特征 | 第12-13页 |
1.3 生物脱色研究进展 | 第13-16页 |
1.4 生物固定化技术的研究进展 | 第16-17页 |
1.5 生物反应器的研究进展 | 第17-18页 |
1.6 本课题主要研究思路与内容 | 第18-20页 |
第二章 黄曲霉A5P1固定化载体的筛选 | 第20-29页 |
2.1 实验材料与方法 | 第20-23页 |
2.1.1 实验试剂与仪器 | 第20-21页 |
2.1.2 培养基 | 第21页 |
2.1.3 固定化载体的预处理 | 第21页 |
2.1.4 固定化细胞的制备及糖蜜酒精废水脱色实验 | 第21-22页 |
2.1.5 丝瓜络用量对糖蜜酒精废水脱色的影响 | 第22页 |
2.1.6 丝瓜络形状对糖蜜酒精废水脱色的影响 | 第22页 |
2.1.7 分析方法 | 第22-23页 |
2.2 结果与讨论 | 第23-28页 |
2.2.1 糖蜜酒精废水浓度对黄曲霉A5P1脱色的影响 | 第23-24页 |
2.2.2 黄曲霉A5P1对糖蜜酒精废水脱色的进程曲线 | 第24页 |
2.2.3 不同载体对糖蜜酒精废水的吸附作用 | 第24-25页 |
2.2.4 不同载体固定化细胞对脱色的结果 | 第25-26页 |
2.2.5 丝瓜络用量对糖蜜酒精废水脱色的影响 | 第26-27页 |
2.2.6 丝瓜络形状对糖蜜酒精脱色的影响 | 第27-28页 |
2.3 小结 | 第28-29页 |
第三章 丝瓜络固定化黄曲霉A5P1的条件优化 | 第29-40页 |
3.1 实验材料与方法 | 第29-31页 |
3.1.1 实验试剂与仪器 | 第29页 |
3.1.2 培养基 | 第29页 |
3.1.3 固定化载体的预处理 | 第29页 |
3.1.4 固定化细胞脱色糖蜜酒精废水的条件优化 | 第29页 |
3.1.5 固定化黄曲霉A5P1菌龄对脱色率的影响 | 第29页 |
3.1.6 丝瓜络固定化黄曲霉A5P1对糖蜜酒精废水的脱色进程 | 第29页 |
3.1.7 丝瓜络固定化黄曲霉A5P1的重复使用 | 第29-30页 |
3.1.8 分析方法 | 第30-31页 |
3.2 结果与讨论 | 第31-39页 |
3.2.1 初始pH值对固定化细胞脱色的影响 | 第31-32页 |
3.2.2 温度对固定化细胞脱色的影响 | 第32页 |
3.2.3 转速对固定化细胞脱色的影响 | 第32-33页 |
3.2.4 接种浓度对固定化细胞脱色的影响 | 第33-34页 |
3.2.5 固定化黄曲霉A5P1菌龄对脱色率的影响 | 第34-35页 |
3.2.6 丝瓜络固定化细胞对糖蜜酒精废水的脱色进程 | 第35-36页 |
3.2.7 游离菌与固定化菌脱色能力的比较 | 第36-37页 |
3.2.8 游离菌与固定化菌产过氧化氢能力的比较 | 第37-38页 |
3.2.9 丝瓜络固定化黄曲霉A5P1的重复使用情况 | 第38-39页 |
3.3 小结 | 第39-40页 |
第四章 丝瓜络固定化黄曲霉A5P1反应器处理糖蜜酒精废水 | 第40-50页 |
4.1 实验材料与方法 | 第40-44页 |
4.1.1 实验试剂与仪器 | 第40-41页 |
4.1.2 培养基 | 第41页 |
4.1.3 固定化菌体的制备方法 | 第41-42页 |
4.1.4 糖蜜酒精废水色素的制备方法 | 第42页 |
4.1.5 黄曲霉A5P1对糖蜜酒精废水、模拟废水的脱色实验 | 第42页 |
4.1.6 反应器脱色实验 | 第42-43页 |
4.1.7 分析方法 | 第43-44页 |
4.2 结果与讨论 | 第44-49页 |
4.2.1 碳氮源含量对反应器脱色的影响 | 第44-45页 |
4.2.2 糖蜜酒精废水与模拟废水色素的分子量比较 | 第45-46页 |
4.2.3 黄曲霉A5P1对糖蜜酒精废水与模拟废水的摇瓶脱色情况 | 第46-47页 |
4.2.4 反应器对模拟废水的脱色情况 | 第47-48页 |
4.2.5 不同浓度模拟废水的处理情况 | 第48-49页 |
4.3 小结 | 第49-50页 |
第五章 结论与展望 | 第50-52页 |
5.1 结论 | 第50-51页 |
5.2 展望 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
附录 | 第57-58页 |
致谢 | 第58-59页 |
攻读硕士学位期间发表的学术论文目录 | 第59页 |